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循環腫瘤細胞（CTC，CirculatingTumor Cell）是存在于外周血中的各類腫瘤細胞的統稱，因自發或診療操作從實體腫瘤病灶（原發灶、轉移灶）脫落，大部分CTC在進入外周血后發生凋亡或被吞噬，少數能夠逃逸并發展成為轉移灶，增加惡性腫瘤患者死亡風險。

原發腫瘤細胞脫落或轉移進入血液，形成循環腫瘤細胞

因此CTC的檢測具有重要的預后和治療意義，但由于其數量可能非常少，因此不容易檢測到這些細胞。據估計，在已經脫離原發腫瘤的細胞中，只有0.01%能夠形成轉移。

在轉移性癌癥患者中，循環腫瘤細胞的頻率約為每毫升全血1-10個CTC，而相比之下，一毫升血液中含有幾百萬白細胞和十億紅細胞。這種低頻率導致識別癌細胞十分困難，這意味著理解CTC生物學特性的關鍵一步是富集、純化、分離每毫升血液中極少量CTC的技術和方法。

微流控芯片利用慣性和磁力從血液中分離出循環腫瘤細胞

微流控芯片利用慣性從血液中分離出循環腫瘤細胞

為克服這一困難，來自杭州電子科技大學的科研團隊結合高精度3D打印和軟光刻技術制造了多層微流控芯片，可用于超高通量富集和分離血液中的循環腫瘤細胞，同時能夠降低終端流速，便于后續實時阻抗和光學檢測，未來有望推動早期癌癥的血液篩查。

用于從血液中分離循環腫瘤細胞（CTC）的三層微流控芯片

基于慣性的循環腫瘤細胞收集

研究人員提出了一種用于循環腫瘤細胞（CTC）收集和下游分析的3D堆疊多層慣性微流控分選芯片。該芯片頂部使用梯形螺旋通道分離CTC和血紅細胞，然后中間和底部使用兩級方形蛇形通道進一步去除RBC并純化目標樣品溶液。

通過整合螺旋通道和蛇形通道降低流速，可以在通道收集出口處應用各種檢測方法，例如阻抗檢測和成像。因此，多級分揀芯片可以實現高流量輸入和低流量輸出，滿足醫療診斷對吞吐量和檢測的要求。

基于三層微流控芯片分離CTC用于后續醫學檢測

此外，由聚二甲基硅氧烷（PDMS）鑄造的3D堆疊結構減少了芯片面積（2cm×3cm），并具有良好的多層觀察透明度。性能方面，該3D微流控芯片能夠以1.3 mL/min的高流速從大量RBC背景細胞中分離SW480（人結腸癌細胞）、A549（人肺腺癌細胞）和Caki-1（人腎透明細胞癌細胞），分離效率>80%，分離純度>90%，濃度倍數約為20。

這項工作旨在提供一種可以用于快速醫學診斷的檢測方法集成的樣品處理方法。

螺旋和蛇形通道分離不同尺寸顆粒的原理和示意圖

微流控芯片設計、制造及參數優化

該3D堆疊多級慣性微流體細胞分選芯片集成了梯形螺旋通道和兩個方形蛇形通道。梯形螺旋通道具有一個入口和兩個出口，是芯片的第一級。在梯形螺旋通道中，流速相對較高，紅細胞將集中在外壁附近，而CTC將集中在內壁附近，進而實現CTC與紅細胞的分離。不同層的通道按照液體流動方向從上到下排列，整個芯片只有一個入口，無需額外輸入鞘流。

多層微流控芯片。（a）（b）（c）分別為第一、第二和第三層。（d）三層疊加。

此外，為了確保通道的所有階段都能在最佳工作狀態下工作，還設計了匹配通道以匹配流動阻力。在自動多級去除紅細胞和目標流的減速、聚集和濃縮后，流速從mL/min降至μL/min，這使得與下游檢測和分析（如阻抗檢測和成像分析）更容易集成。

參數優化過程

概念驗證

概念驗證實驗可以通過分離兩種不同尺寸的聚苯乙烯微粒進行。在只有一個單通道注射泵驅動輸入樣品的情況下，光學顯微鏡可以捕獲通道每一級出口處的分選過程。在每次測試中，將10秒的視頻數據作為圖像疊加的原始數據。然后，通過ImageJ軟件對600張圖片的垂直疊加最小化，獲得粒子軌跡。

多級通道結構圖

基于慣性實現不同尺寸微顆粒的篩選。較大顆粒會保持向前流動，但較小顆粒會被兩側支線分流

組合不同通道結構的各級出口分離效果比較

腫瘤細胞實驗

最后，研究者使用腫瘤細胞（SW480、A549和Caki-1）進行了驗證。通過使用概念驗證實驗中所得的最佳工作流速，將配置的血細胞與腫瘤細胞的混合液通入多級芯片結構，對收集口細胞情況進行分析。結果表明，該3D堆疊芯片可以實現了從大量背景細胞中分離多種類型的腫瘤細胞，分離效率>80%，分離效率>90%。